Отправить эту статью по почте 
СРАВНИТЕЛЬНЫЙ АНАЛИЗ ВЛИЯНИЯ ФТОРХИНОЛОНОВ НА ЛЕЙКОГРАММУ КРОВИ ЦЫПЛЯТ
Аннотация
Цель. Осуществить сравнительный анализ влияния фторхинолонов на лейкоцитарную формулу крови цыплят.
Материалы и методы. Проведены исследования с применением ципрофлоксацина, офлоксацина, левофлоксацина, моксифлоксацина, норфлоксацина и энрофлоксацина. Для эксперимента были сформированы семь групп цыплят кросса «Хайсекс Браун». Контрольная группа на протяжении всего опыта получала чистую питьевую воду, опытные группы в течение десяти суток получали с водой один из перечисленных фторхинолоновых антибактериальных препаратов в дозе 200 мг/л. Отбор крови произведен методом внутрисердечной пункции на первые, третьи, пятые, седьмые и девятые сутки после отмены препарата. Лейкоцитарную формулу определяли относительно общего числа лейкоцитов по процентному и абсолютному содержанию отдельных форм клеток.
Результаты. Достоверные изменения количества псевдоэозинофилов не имели выраженной тенденции, проявлялись единовременно под влиянием каждого препарата в разные дни исследования. К седьмым и девятым суткам после отмены препаратов все исследуемые фторхинолоны, кроме офлоксацина, вызвали лимфопению. Ципрофлоксацин является единственным исследуемым антимикробным средством, использование которого в течение эксперимента не вызвало достоверных изменений в количестве моноцитов. В результате применения энрофлоксацина и офлоксацина была зафиксирована кратковременная эозинофилия. Следует отметить стойкую базофилию, вызванную левофлоксацином, энрофлоксацином и офлоксацином.
Заключение. Антимикробные препараты группы фторхинолонов, в результате десятидневного приема, привели к изменениям соотношения различных видов лейкоцитов в крови цыплят, однако к завершению эксперимента все значения лейкограммы возвращаются к физиологической норме.
Ключевые слова
Полный текст:
>PDF
Литература
Douros A., Grabowski K., Stahlmann R. Safety issues and drug–drug interactions with commonly used quinolones. Expert Opinion on Drug Metabolism & Toxicology, 2015, vol. 11(1), pp. 25–39.
Govendir M., Hansen T., Kimble B., Norris J.M., Baral R.M., Wigney D.I., Gottlieb S., Malik R. Susceptibility of rapidly growing mycobacteria isolated from cats and dogs, to ciprofloxacin, enrofloxacin and moxifloxacin. Veterinary Microbiology, 2011, vol. 147(1-2), pp. 113–118.
Stahlmann R., Lode H.M. Risks associated with the therapeutic use of fluoroquinolones. Expert Opinion on Drug Safety,2013,vol.12(4),pp. 497–505.
Hooton T.M., Scholes D., Gupta K., Stapleton A.E., Roberts P.L., Stamm W.E. Amoxicillin-Clavulanate vs Ciprofloxacin for the Treatment of Uncomplicated Cystitis in Women. JAMA, 2005, vol. 293(8), pp. 949–955.
Martinez M., McDermott P., Walker R. Pharmacology of the fluoroquinolones: A perspective for the use in domestic animals. The Veterinary Journal, 2006, vol. 172(1), pp. 10–28.
Drlica K., Malik M., Kerns R.J., Zhao X. Quinolone-Mediated Bacterial Death. Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 2007,vol.52(2), pp. 385–392.
Bertino J.S. Impact of antibiotic resistance in the management of ocular infections: the role of current and future antibiotics. Clinical Ophthalmology, 2009, vol. 3, pp. 507–521.
Feio M.J., Sousa I., Ferreira M., Cunha-Silva L., Saraiva R.G., Queirós C., Gameiro P. Fluoroquinolone-metal complexes: A route to counteract bacterial resistance? Journal of Inorganic Biochemistry, 2014,vol.138, pp. 129–143.
Madurga S., Sánchez-Céspedes J., Belda I., Vila J., Giralt E. Mechanism of Binding of Fluoroquinolones to the Quinolone Resistance-Determining Region of DNA Gyrase: Towards an Understanding of the Molecular Basis of Quinolone Resistance. ChemBioChem, 2008, vol. 9(13), pp. 2081–2086.
Stein G.E., Goldstein E.J.C. Fluoroquinolones and Anaerobes. Clinical Infectious Diseases, 2006, vol. 42(11), pp. 1598–1607.
Hermsen E.D., Hovde L.B., Sprandel K.A., Rodvold K.A., Rotschafer J.C. Levofloxacin plus Metronidazole Administered Once Daily versus Moxifloxacin Monotherapy against a Mixed Infection of Escherichia coli and Bacteroides fragilis in an In Vitro Pharmacodynamic Model. Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 2005, vol. 49(2), pp. 685–689.
Pitout J.D.D., Nordmann P., Laupland K.B., Poirel L. Emergence of Enterobacteriaceae producing extended-spectrum β-lactamases (ESBLs) in the community. Journal of Antimicrobial Chemotherapy, 2005, vol. 56(1), pp. 52–59.
Silley P., Stephan B., Greife H.A., Pridmore A. Comparative activity of pradofloxacin against anaerobic bacteria isolated from dogs and cats. Journal of Antimicrobial Chemotherapy, 2007, vol. 60(5), pp. 999–1003.
Van Bambeke F., Michot J.-M., Van Eldere J., Tulkens P.M. Quinolones in 2005:an update. Clinical Microbiology and Infection,2005,vol.11(4),pp. 256–280.
Gibson J.S., Cobbold R.N., Kyaw-Tanner M.T., Heisig P., Trott D.J. Fluoroquinolone resistance mechanisms in multidrug-resistant Escherichia coli isolated from extraintestinal infections in dogs. Veterinary Microbiology, 2010, vol. 146(1-2), pp. 161–166.
Liu X., Boothe D.M., Jin Y., Thungrat K. In vitro potency and efficacy favor later generation fluoroquinolones for treatment of canine and feline Escherichia coli uropathogens in the United States. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 2012, vol. 9(2), pp. 347–354.
Cirz R.T., O’Neill B.M., Hammond J.A., Head S.R., Romesberg F.E. Defining the Pseudomonas aeruginosa SOS Response and Its Role in the Global Response to the Antibiotic Ciprofloxacin. Journal of Bacteriology, 2006, vol. 188(20), pp. 7101–7110.
Saroj S.D., Clemmer K.M., Bonomo R.A., Rather P.N. Novel Mechanism for Fluoroquinolone Resistance in Acinetobacter baumannii. Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 2012, vol. 56(9), pp. 4955–4957.
Riesbeck K., Andersson J., Gullberg M., Forsgren A. Fluorinated 4-quinolones induce hyperproduction of interleukin 2. Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA, 1989, vol. 86(8), pp. 2809–2813.
Ball P., Tilloston G. Tolerability of fluoroquinolone antibiotics. Past, present and future. Drug safety, 1995, vol. 13(6), pp. 343–358.
Moiseeva A.A., Skvortsov V.N., Prisnyi A.A. Vliyanie tsiprofloksatsina na leykotsitarnuyu formulu krovi tsyplyat pri eksperimental’noy stafilokokkovoy infektsii [Influence of ciprofloxacin on chick blood leukocytic formula in experimental staphylococcal infection]. Uchenye zapiski Kazanskoy gosudarstvennoy akademii veterinarnoy meditsiny imeni N.E. Baumana [Scientists notes from the N.E. Bauman Kazan State Academy of Veterinary Medicine]. 2019, Vol. 239(III). pp. 171–176.
Prisnyi A.A., Moiseeva A.A., Skvortsov V.N. Vliyanie tsiprofloksatsina na leykogrammu krovi tsyplyat pri eksperimental’nom kolibakterioze [Effect of ciprofloxacin on chick blood leukogram in experimental colibacillosis]. Mezhdunarodnyy vestnik veterinarii [International Journal of Veterinary Medicine], 2019, № 3. pp. 28-32.
DOI: https://doi.org/10.12731/2658-6649-2020-12-2-11-24
Ссылки
- На текущий момент ссылки отсутствуют.
(c) 2020 Andrey Andreevich Prisnyi, Anna Anatolievna Moiseeva, Vladimir Nikolaevich Skvortsov
Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution-NonCommercial-NoDerivatives» («Атрибуция — Некоммерческое использование — Без производных произведений») 4.0 Всемирная.
ISSN 2658-6649 (print)
ISSN 2658-6657 (online)